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DRR014A | 50 次 | 1,200 元 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
制品说明 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
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PCR(Polymerase Chain Reaction;聚合酶链式反应)是一种体外扩增DNA的简单而有效的方法。虽然原理上PCR法是扩增DNA,RNA不能直接被扩增,但是经过反转录酶的作用把RNA反转录成cDNA后,PCR法便可应用于RNA的解析了。迄今为止,此方法已广泛应用于RNA的构造解析、cDNA的克隆及RNA水平上的表达解析等多种领域。 PrimeScriptTM RT-Kit 是具有良好的延伸性能与高扩增效率的2 Step RT-PCR试剂盒。反转录反应使用了TaKaRa独自开发的新型反转录酶PrimeScript RTase ;PCR反应使用了扩增性能良好的Hot Start 型DNA聚合酶TaKaRa Ex Taq HS。 本试剂盒具有以下特点: 1. 进行高效的RT-PCR扩增。 2. 在标准的RNA反转录反应温度(42℃)下,便可使具有复杂结构的RNA进行良好的延伸, 可以避免RNA在高温条件下的降解。 3. 能有效抑制非特异性的PCR扩增。 4. 使用本试剂盒扩增得到的目的产物3' 端附有一个A 碱基,可以直接克隆于T-Vector中。 本试剂盒含有反转录反应及PCR扩增反应所需的全部试剂。 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
各引物的序列 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
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Limited Use Label License: [M57], [L15], [P1] | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
*4 该序列和TaKaRa RNA PCR Kit (AMV) Ver.3.0 (TaKaRa Code: DRR019A) 的Oligo dT Adaptor Primer不同,不含有M13 Primer M4所对应的序列。 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Positive Control RNA | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
本试剂盒中的Control RNA是以pSPTet3质粒(质粒中的SP6启动子下游插入长约1.4 kbp的pBR322来源的DNA片段,其DNA片段上含有抗四环素基因)为模板由SP6 RNA聚合酶经体外转录而得到的。Control RNA(约1.4 kb)是带有30个A碱基的具有Poly(A)+尾的RNA。当把Control RNA经RT-PCR合成的双链cDNA插入质粒时,该质粒便可获得四环素抗性。Control RNA简图见图1。 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
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图1 Positive Control RNA: 使用各Control Primer可以扩增462 bp的DNA片段 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
RNA PCR的原理 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
PrimeScriptTM RT-PCR Kit 首先用PrimeScript RTase将RNA合成cDNA,再取反应液的一部分作为模板,由TaKaRa Ex Taq HS进行PCR扩增。将RNA反转录成cDNA的引物可以使用Random 6 mers、Oligo dT Primer或特异性下游引物等。 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
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图2 PrimeScriptTM RT-PCR Kit RNA PCR的原理 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
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图3 PrimeScriptTM RT-PCR Kit 的操作流程 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
反转录反应时Primer的选择 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
反转录引物的选择,应结合实验的具体情况,选择以下三种引物,即:Random 6 mers、Oligo dT Primer或特异性下游引物。对没有发夹结构的短链mRNA,上述三种引物都可以使用;一般情况下的反转录引物的选择请参照以下说明。 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
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特长 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
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Protocol | A. 反转录反应 | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
实验操作程序 | 1. 在Microtube管中配制下列混合液。 | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
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合成cDNA的引物可结合实际情况从Oligo dT Primer、Random 6 mers、Specific Primer中任选一种,请参照“反转录引物的选择”。 Template RNA最多可加至8 ml,当使用Total RNA时,最多可加至5 mg。(推荐使用量:100 pg~ 1 mg)。 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
2. 在PCR仪上进行变性、退火反应。 65℃ 5 min (说明:变性、退火操作有利于反转录引物和模板的特异性退火,可提高反转录反应效率。) 3. 离心数秒钟使模板RNA/引物等的混合液聚集于Microtube管底部。 4. 在上述Microtube管中配制下列反转录反应液。 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
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5. 按以下条件进行PCR反应。 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
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*3 反转录反应引物为Random 6 mers时进行,此操作可使Random 6 mers在42℃(*50℃)和模板 RNA充分退火、延伸,增加反转录效率。 *4 进行长片段DNA扩增时,为了避免破损1st cDNA链,请进行70℃、15 min 的失活反应。 (说明:PrimeScript RTase对具有复杂二级结构的模板同样具有良好的延伸性能,通常可在42℃下进行反应。使用特异性下游引物进行反转录时,有时会因错配而产生非特异性扩增。此时可将温度升到50℃,可能会减少非特异性扩增。) | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
B. PCR反应 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
1. 按下列组成配制PCR反应液。 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
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*5 Positive Control RNA使用F-1 Primer。 *6 Positive Control RNA使用R-1 Primer。 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
2. 反应条件 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
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*7 反转录引物使用Oligo dT Primer、Random 6 mers、R-1 Primer中的任何一种引物,在进行PCR 扩增时使用Control Primer F-1和R-1引物都可以得到462 bp的PCR扩增产物。 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
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