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DRR012A | 100 次 | 1,700 元 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
制品说明 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
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PCR(Polymerase Chain Reaction;聚合酶链式反应)是一种体外扩增DNA的简单而有效的方法。虽然原理上PCR法是扩增DNA,RNA不能直接被扩增,但是经过反转录酶的作用把RNA反转录成cDNA后,PCR法便可应用于RNA的解析了。迄今为止,此方法已广泛应用于RNA的构造解析、cDNA的克隆及RNA水平上的表达解析等多种领域。 本试剂盒含有从RNA反转录至cDNA以及通过PCR扩增此cDNA(RT-PCR反应)所需的全部试剂,即用AMV(Avian Myeloblastosis Virus)由来的反转录酶,由RNA反转录至cDNA, 然后再在同一反应管中用TaKaRa LA Taq扩增此cDNA,操作简单,使用方便。本试剂盒中的Oligo dT-Adaptor Primer的独特设计,使从Poly (A)+ RNA 3' 端合成cDNA的效率更高, 从而可以利用3'-RACE法高效扩增RNA的3' 端未知区域。 使用本试剂盒时,10 ml的反转录反应体系中,RNA样品的最大添加量可达4.75 ml,可以有效解析低拷贝数RNA。而且,本制品是在RNA PCR Kit的基础上导入了LA PCRTM技术,使更长、更准确的RT-PCR反应成为了可能。 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
各引物的序列 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
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Positive Control RNA | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Limited Use Label License: [M57], [P1] | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
本试剂盒中的Control RNA是以pSPTet3质粒(质粒中的SP6启动子下游插入长约1.4 kbp的pBR322来源的DNA片段,其DNA片段上含有抗四环素基因)为模板由SP6 RNA聚合酶经体外转录而得到的。Control RNA(约1.4 kb)是带有30个A碱基的具有Poly(A)+尾的RNA。当把Control RNA经RT-PCR合成的双链cDNA插入质粒时,该质粒便可获得四环素抗性。Control RNA简图见图1。 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
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图1 Control RNA: 使用各Primer所扩增的DNA片段 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
RNA LA PCR的原理 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
本试剂盒使用AMV由来的反转录酶由RNA合成cDNA,并可在同一反应管中使用TaKaRa LA Taq酶扩增此cDNA。Random 9 mers、Oligo dT-Adaptor Primer或特异性下游引物等均可作为反转录引物用于cDNA合成。Oligo dT-Adaptor Primer同时适用于3'-RACE实验。 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
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图2 RNA LA PCR的原理 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
反转录反应时Primer的选择 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
用于反转录的引物可视实验具体情况选择Random 9 mers、Oligo dT-Adaptor Primer或特异性下游引物。对于不具有Hairpin构造的短链mRNA,3种引物中的任何一种都可以使用, 但一般应按以下方法进行选择。 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
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特长 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
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Protocol | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
A. 反转录反应 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
合成cDNA的引物可结合实际情况从Oligo dT-Adaptor Primer、Random 9 mers或特异性下游引物中任选一种。 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
实验操作程序 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
1. 按下列反应组成配制反应液。 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
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2. 按以下条件进行反转录反应。 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
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此反应体系中已经加入了足够的dNTP Mixture,PCR反应时不需要再添加dNTP Mixture。 Reverse Transcriptase能与cDNA结合,直接进行PCR反应有阻害作用。因此,PCR反应前,必须进行99℃、5分钟加热使Reverse Transcriptase失活。反应液中Reverse Transcriptase的浓度增加会使失活变得困难,在使用长链RNA进行反转录反应时,不要增加Reverse Transcriptase的量,可将延伸反应时间延长。 使用Random 9 mers时,先进行30℃保温10 min,使Random 9 mers达到足够长度,以便在 42℃~55℃退火时与模板RNA充分结合。 AMV由来的Reverse Transcriptase,即使在55℃下也能进行反转录反应。但在反转录长链RNA (>2 kb) 时,建议在42℃左右进行。 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
B. PCR反应 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
1. 按下列反应组成配制反应液。 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
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*5. 反转录反应时如使用了特异性下游PCR引物,可用0.5 ml灭菌蒸馏水代替下游PCR引物。如有可 能,下游特异性PCR用引物不要使用反转录引物,这样能提高PCR扩增效率。 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
2. 把1. 的反应液加入到A-2.反转录结束后的PCR反应管中,轻轻混匀。 3. 按以下条件进行PCR反应*6。 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
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*6. PCR条件设定 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
退火温度 可根据实际情况适当地提高或降低退火温度 (50℃~65℃)。 延伸时间 延伸时间因目的序列长度的不同而不同,通常TaKaRa LA Taq在72℃时,每1 kbp延伸时间设定1~2 min。 循环次数 cDNA量较少时,循环次数可增加为40~50次。 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
4. | 反应结束后,取反应液 (5 ~ 10 ml) 进行琼脂糖凝胶电泳,确认PCR反应产物。如果此PCR产物需用于以后实验,须将PCR产物冷冻保存。 | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Application | : Human heart mRNA : Dystrophin (6, 8, 12 kbp) | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
长链mRNA的RT-PCR | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
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问答 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
RT-PCR反应后,无PCR产物,怎么办? | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
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首先应严格按说明书要求,进行Control反应。如Control反应情况正常,说明实验操作方面没有问题。应从您提取的RNA样品的纯度和添加量、引物的设计情况、参考文献的可信度以及RT-PCR条件的设定等方面加以考虑;如Control反应不正常,应从实验操作的准确性、实验器具处理、PCR仪的条件设定等方面加以考虑。 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
RT反应后的PCR反应体系中,不加dNTP Mixture,为什么? | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
由于在RT反应体系中已经加入了足够量的dNTP Mixture,因此在PCR反应时,不需再添加dNTP Mixture。如果在PCR反应时继续添加了dNTP Mixture,虽然PCR反应仍然可以进行,但过量的dNTP有可能影响PCR反应的顺利进行,降低DNA的扩增效率。 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
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