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D103A | 1.0 mg | 500 元 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
D103B (A×5) | 5.0 mg | 2,125 元 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
D103C (A×10) | 10.0 mg | 4,000 元 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
pMD19-T Simple Vector | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
D104A | 1.0 mg | 500 元 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
D104B (A×5) | 5.0 mg | 2,125 元 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
D104C (A×10) | 10.0 mg | 4,000 元 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
制品说明 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
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pMD18-T Simple Vector、pMD19-T Simple Vector是一种高效克隆PCR产物 (TA Cloning) 的专用载体。这两种载体是分别由pUC18、pUC19载体改建而成,它消除了pUC18、pUC19载体上的多克隆酶切位点,再在pUC18、pUC19载体的多克隆酶切位点处导入了EcoR V 酶切位点,使用EcoR V进行酶切反应后,再在两侧的3'端添加 "T" 而成。因大部分耐热性DNA聚合酶进行PCR反应时都有在PCR产物的3'末端添加一个 "A" 的特性,所以使用这两种制品可以大大提高PCR产物的连接、克隆效率。 这两种载体尽管消除了LacZ基因上的多克隆酶切位点,但不影响b-半乳糖苷酶的正常表达,因此,PCR产物克隆后仍可以利用a-互补性进行蓝白菌落的筛选, 挑选阳性克隆。 由于这两种载体上消除了多克隆酶切位点,克隆后的PCR产物将无法使用载体上的限制酶切下,需要在PCR扩增引物上导入合适的酶切位点。此时如果使用PCR扩增引物导入的酶切位点进行DNA酶切时,酶切反应将不会受到T载体上其它多克隆酶切位点上的限制酶影响,可以大大提高酶切效率,增加亚克隆成功率。 由于这两种载体是以pUC18、pUC19载体为基础构建而成,所以它们具有同pUC18、pUC19载体相同的功能。此外,这两种制品中的高效连接液Solution I可以在极短时间内 (约30分钟) 完成连接反应,其连接液可以直接用于细菌转化,大大方便了实验操作。制品中的Control Insert (500 bp) 还可以用于Control反应。 pMD19-T Simple Vector与pMD18-T Simple Vector 相比,pMD19-T Simple Vector的 b-半乳糖苷酶的表达活性更高,菌落显示蓝色的时间缩短,菌落显示的蓝色更深。因此,克隆后更容易进行克隆体的蓝白筛选。 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
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纯度 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Control Insert克隆后的白色菌落中,有90%以上含有Insert DNA片段。 Control Insert经克隆后,用双脱氧测序法确认T碱基的存在。 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
用途 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
进行TA克隆,克隆PCR产物。 对克隆后的PCR产物使用BcaBESTTM Sequencing Primers、M13 Primers进行DNA测序。 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
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pMD18-T Simple Vector相关位点说明 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
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pMD19-T Simple Vector相关位点说明 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
![]() | 操作方法 | ![]() | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
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加入5 ml(等量)的 Solution I。 16℃反应30分钟。 注 ①室温(25℃)也能正常进行连接反应,但反应效率稍微降低。 ②5分钟也能正常进行连接反应,但反应效率稍微降低。 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
全量(10 ml)加入至100 ml JM109感受态细胞中冰中放置30分钟。 42℃加热45秒钟后,再在冰中放置1分钟。 加入890 ml SOC培养基,37℃振荡培养60分钟。 在含有X-Gal、IPTG、Amp的L-琼脂平板培养基上培养,形成单菌落。计数白色、 蓝色菌落。 挑选白色菌落,使用PCR法确认载体中插入片段的长度大小。 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
结果 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
使用Control Insert时的连接/转化结果如下,使用的感受态细胞的转化效率为:1.5×108 cfu/mg pUC19 DNA。 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
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* 效率是指白色菌落中的目的DNA Insert片段的连入效率。 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
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