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D105A | 1.0 mg | 300 元 | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
D105B (A×5) | 5.0 mg | 1,275 元 | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
D105C (A×10) | 10.0 mg | 2,400 元 | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
D106A | 1.0 mg | 300 元 | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
D106B (A×5) | 5.0 mg | 1,275 元 | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
D106C (A×10) | 10.0 mg | 2,400 元 | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
制品说明 | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
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pSIMPLE-18 EcoR V/BAP、pSIMPLE-19 EcoR V/BAP Vector是一种高效克隆末端平滑PCR产物的专用载体。这两种载体是分别由pUC18、pUC19载体改建而成,它消除了pUC18、pUC19载体上的多克隆酶切位点,再在多克隆酶切位点处导入了EcoR V酶切位点,使用EcoR V将其切成末端平滑的线性DNA后,进行了5'末端的去磷酸化处理,以避免克隆DNA片段时产生大量载体自连现象。 这两种载体尽管消除了LacZ基因上的多克隆酶切位点,但不影响 b-半乳糖苷酶的正常表达,PCR扩增片段克隆于载体后仍可以利用a-互补性进行蓝白菌落的筛选,挑选阳性克隆。 有很多高保真DNA聚合酶,如:TaKaRa Pyrobest、KOD、Pfx、Pfu等,其扩增的DNA片段为平滑末端,可以方便使用这两种载体进行DNA克隆。由于这两种载体的5'末端进行了去磷酸化处理,如果PCR扩增片段的5'末端不带磷酸基团时,应对其进行5'末端磷酸化 (可使用TaKaRa DNA Kination Kit,TaKaRa Code:D402) 处理后再使用载体进行DNA克 隆。由于这两种载体上消除了多克隆酶切位点,当PCR产物使用这两种载体进行DNA克隆时,将无法使用载体上的限制酶切下, 需要在PCR扩增引物上导入合适的酶切位点。此时如果使用PCR扩增引物导入的酶切位点进行DNA酶切时,酶切反应将不会受到载体上其它多克隆酶切位点上的限制酶影响,可以大大提高酶切效率,增加亚克隆成功率。 由于这两种载体是分别以pUC18、pUC19载体为基础构建而成,所以它具有同pUC18、pUC19载体相同的功能。此外,这两种制品中的高效连接液Ligation Mix可以在极短时间内 (约5分钟) 完成连接反应,且此连接液可以直接用于细菌转化,大大方便了实验操作。制品中的Control Insert 2 (500 bp) 还可以用于Control反应。 pSIMPLE-19 EcoR V/BAP Vector 与pSIMPLE-18 EcoR V/BAP Vector 相比,pSIMPLE-19 EcoR V/BAP Vector的b-半乳糖苷酶的表达活性更高,菌落显示蓝色的时间缩短,菌落显示的蓝色更深。因此,克隆后更容易进行克隆体的蓝白筛选。 这两种载体同样可以用于末端平滑的其他DNA片段的克隆。 | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
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纯度 | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Control Insert 2经克隆后的白色菌落中,有90%以上含有Insert DNA片段。 | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
用途 | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
平滑末端PCR产物的克隆。 其他平滑末端DNA片段的克隆。 对克隆后的DNA片段使用BcaBESTTM Sequencing Primers、M13 Primers进行DNA测序。 | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
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pSIMPLE-18 EcoR V/BAP Vector相关位点说明 | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
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pSIMPLE-19 EcoR V/BAP Vector相关位点说明 | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Protocol | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
操作方法 | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Control DNA片段的克隆实验 | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
在微量离心管中配制下列DNA溶液,全量为5 ml。 | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
1. | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
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加入5 ml(等量)的 Ligation Mix。 16℃反应30分钟。 注 ①室温(25℃)也能正常进行连接反应,但反应效率稍微降低。 ②5分钟也能正常进行连接反应,但反应效率稍微降低。 | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
全量(10 ml)加入至100 ml JM109感受态细胞中冰中放置30分钟。 42℃加热45秒钟后,再在冰中放置1分钟。 加入890 ml SOC培养基,37℃振荡培养60分钟。 在含有X-Gal、IPTG、Amp的L-琼脂平板培养基上培养,形成单菌落。计数白色、 蓝色菌落。 挑选白色菌落,使用PCR法确认载体中插入片段的长度大小。 | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
注: 此时也可以提取质粒,然后经EcoR V酶切鉴定插入DNA片段。 | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
结果 | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
使用Control Insert 2时的连接/转化结果如下,使用的感受态细胞的转化效率为:3×108 cfu/mg pUC19 DNA。 | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
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* 效率是指白色菌落中的目的DNA Insert片段的插入效率。 | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
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